Клинический разбор в общей медицине №07 2026
Marina V. Stolbova1, Mikhail E. Fedorov2, Aleksandr S. Panin2, Amanzhan S. Aldaniazov1,
Alina K. Makenova1, Ilya N. Nikiforov1, Nikolay A. Stolbov1, Margarita A. Kazakova1
1 Orenburg State Medical University, Orenburg, Russia;
2 Orenburg Regional Clinical Center for Surgery and Traumatology, Orenburg, Russia
amanzhanaldanyazov@yandex.ru
Abstract
Acute purulent pleural empyema is a severe post-surgical complication, typically caused by common pathogens. However, rare opportunistic bacteria such as Elizabethkingia anophelis can lead to severe infections that are difficult to treat due to broad antibiotic resistance. We analyzed clinical data of a 69-year-old male patient with pleural empyema following lung lobectomy. Staged interventions were performed (endobronchial valve occlusion, thoracoscopic pleural sanitation, open thoracostomy) alongside advanced microbiological examinations (pathogen identification by MALDI-ToF MS and susceptibility testing according to EUCAST criteria). Standard empirical antimicrobial therapy (meropenem, metronidazole) was ineffective. E. anophelis, resistant to most antibiotics, was isolated from the pleural exudate. Early accurate identification of the rare pathogen E. anophelis and a multimodal treatment strategy (adequate pleural drainage with combined antibiotic therapy) led to a successful outcome, highlighting the importance of timely diagnosis and a multidisciplinary approach.
Keywords: pleural empyema, Elizabethkingia anopheles, antibiotic resistance, thoracic surgery, opportunistic infection.
For citation: Stolbova M.V., Fedorov M.E., Panin A.S., Aldaniazov A.S., Makenova A.K., Nikiforov I.N., Stolbov N.A., Kazakova M.A. Clinical case of acute purulent empyema caused by Elizabethkingia anopheles. Clinical review for general practice. 2026; 7 (7): 77–80 (In Russ.).
DOI: 10.47407/kr2026.7.7.00889
Oстрая гнойная эмпиема плевры – тяжелое инфекционно-хирургическое осложнение, особенно в случаях несостоятельности бронхиальной культи после резекции легкого. Успешное лечение требует адекватной эвакуации гноя, устранения сообщения бронха с плеврой и правильного подбора антибиотикотерапии. Стандартная эмпирическая терапия эмпием нацелена на распространенных возбудителей (стафилококки, стрептококки, анаэробы и пр.). Однако в отдельных ситуациях причиной эмпиемы могут выступать редкие условно-патогенные микроорганизмы, часто устойчивые к большинству антибиотиков, что существенно затрудняет лечение [1, 2]. Одним из таких нетипичных возбудителей является Elizabethkingia anophelis – грамотрицательная неферментирующая палочка из семейства Flavobacteriaceae. Эта бактерия считается оппортунистическим патогеном, вызывающим тяжелые инфекции у новорожденных и ослабленных взрослых пациентов [2–4]. В последние годы отмечается рост числа сообщений об инфекциях, вызываемых E. anophelis, представляющих угрозу жизни пациентов [5]. Зарегистрированы вспышки госпитальных инфекций, вызванных E. anophelis, в разных странах [6, 7].
Особую проблему представляет множественная лекарственная устойчивость E. anophelis. Для данного возбудителя характерна врожденная резистентность к большинству β-лактамных антибиотиков (включая цефалоспорины и карбапенемы), к аминогликозидам и другим распространенным препаратам [1, 8]. Стандартные автоматизированные идентификационные системы могут ошибочно определять E. anophelis как близкородственный вид E. meningoseptica, затрудняя выбор адекватной терапии [2, 8]. В то же время E. anophelis нередко сохраняет чувствительность к фторхинолонам, тетрациклинам, рифампицинам и сульфаниламидам. Поэтому ранняя точная идентификация патогена и тестирование его чувствительности имеют решающее значение для снижения летальности [2]. По данным разных исследований, летальность при инфекциях, вызванных E. anophelis, достигает 24–57% вследствие задержки назначения эффективных антибиотиков [2, 6].
Исходя из вышесказанного, представлялся актуальным анализ редкого случая послеоперационной эмпиемы плевры, вызванной E. anophelis.
Клинический случай
Пациент Х., 69 лет, поступил в пульмонологический центр в мае 2025 г. с диагнозом «периферический рак нижней доли правого легкого T1bN0M0». Пациенту проведена расширенная нижняя лобэктомия справа с системной лимфаденэктомией. По результатам гистологического исследования выявлена аденокарцинома. В раннем послеоперационном периоде состояние осложнилось несостоятельностью культи правого нижнедолевого бронха, что привело к развитию правостороннего пневмоторакса, пневмомедиастинума, обширной подкожной эмфиземы и дальнейшему развитию острой гнойной эмпиемы плевры справа. По поводу сформировавшейся эмпиемы плевры на 26-е сутки после расширенной нижней лобэктомии пациент переведен в областной центр торакальной хирургии.

При поступлении в хирургическое торакальное отделение: состояние тяжелое, одышка, обширная подкожная эмфизема распространяется на лицо, шею, грудную клетку, верхние отделы живота и конечностей. В правой плевральной полости дренаж по Бюлау, по дренажу активный сброс воздуха и эвакуация гнойного экссудата. Дренаж подключен к аппарату активной плевроаспирации. Температура тела 37,0°С, частота сердечных сокращений – 97 уд/мин, артериальное давление – 130/80 мм рт. ст., частота дыхательных движений (ЧДД) – 24 в минуту, сатурация – 95–96% на увлажненном кислороде потоком 7 л/мин. Послеоперационные раны на грудной клетке зажиты первично, без признаков воспаления и нагноения. Предварительный диагноз: «Острая гнойная эмпиемы плевры справа с бронхоплевральным свищом. Состояние после расширенной нижней лобэктомии справа. Несостоятельность культи нижнедолевого бронха правого легкого. Пневмомедиастинум. Обширная подкожная эмфизема. Острая дыхательная недостаточность». Начата эмпирическая антибактериальная терапия: меропенем 1 г 3 раза в сутки внутривенно, метронидазол 500 мг 3 раза в сутки внутривенно капельно. Проводились ежедневные санации плевральной полости антисептиками с активной аспирацией содержимого. Ввиду продолжающегося активного сброса воздуха по дренажу консилиум торакальных хирургов принял решение об эндоскопической клапанной бронхоблокации с целью купирования бронхоплеврального свища. Под местной анестезией выполнена лечебно-диагностическая фибробронхоскопия: визуализирован дефект культи правого нижнедолевого бронха диаметром около 10 мм, покрытый фибринозным налетом. В просвет культи установлен односторонний клапанный эндобронхиальный блокатор №12. После установки клапана поступление воздуха в плевральную полость прекратилось; плевральный экссудат эвакуирован до формирования отрицательного давления. Продолжены антибактериальная терапия, санации плевральной полости. На фоне проводимого лечения отмечалась положительная динамика: сброса воздуха не наблюдалось, отделяемое стало светлее, подкожная эмфизема значительно уменьшилась. Однако на 6-е сутки вновь появился сброс воздуха по дренажу, наросла подкожная эмфизема. Выполнена контрольная фибробронхоскопия, при которой обнаружена дислокация эндобронхиального клапана в плевральную полость: свищевой дефект вновь открыт, диаметр до 20 мм, клапан сместился в плевральную полость, удален эндоскопически. Таким образом, малоинвазивная попытка устранения бронхоплеврального свища оказалась неэффективной. Состояние прогрессивно ухудшалось: наросла дыхательная недостаточность (ЧДД – 25–30 в минуту, требовалась кислородная поддержка), сохранялся обильный дренаж гнойного отделяемого (200–300 мл/сут) с активным сбросом воздуха.
Лабораторные и инструментальные методы обследования. Компьютерная томография органов грудной клетки (при поступлении) подтвердила наличие обширного правостороннего пневмогидроторакса на фоне послеоперационного дефекта бронха. Правое легкое частично ателектазировано и сдавлено; висцеральная плевра утолщена местами до 5–7 мм. В просвете плевральной полости определяются уровень жидкости (~25 мм) и свободный газ. Выражены признаки медиастинальной и подкожной эмфиземы. Контрольная обзорная рентгенография после повторного оперативного вмешательства (от 28.06.2025) показала частичный ателектаз правого легкого, умеренное количество воздуха и жидкости в правой плевральной полости; дренажи установлены корректно. Сохранялись признаки пневмосклероза и подкожной эмфиземы.
При поступлении был взят посев плеврального отделяемого, однако первоначально роста патогенной флоры не получено (результат интерпретирован как смешанная госпитальная микрофлора). С учетом неблагоприятной динамики инфекционного процесса консилиумом принято решение о расширенном микробиологическом анализе. Повторный забор гнойного содержимого из плевральной полости произведен на 14-е сутки после поступления, материал направлен в референс-лабораторию для углубленного исследования. Посев на аэробные/анаэробные бактерии и грибы выполнен с применением автоматизированных анализаторов; идентификация возбудителя – методом MALDI-ToF масс-спектрометрии. По результатам культурального исследования (протокол №1626 от 26.06.2025) выросла чистая культура, идентифицированная как E. anophelis (концентрация ~106 КОЕ/мл). Чувствительность выделенного штамма к антибиотикам, согласно критериям EUCAST, оказалась резко ограниченной (см. таблицу). Таким образом, стандартная комбинированная терапия меропенемом и метронидазолом не могла эрадицировать данный возбудитель. По согласованию с клиническим фармакологом антибиотикотерапию продолжили препаратами резерва, потенциально активными против Elizabethkingia: с 24.06.2025 эмпирически начато применение левофлоксацина (высокодозно) и ко-тримоксазола.
Выполнена видеоторакоскопия (25.06.2025) с ревизией правой плевральной полости. Обнаружено коллабированное легкое легкое; париетальная и висцеральная плевра гиперемирована, покрыта толстым слоем фибринозно-гнойных наложений, оболочки уплотнены местами до 3–5 мм. В проекции корня правого легкого визуализирована культя нижнедолевого бронха с зияющим дефектом 15–20 мм. Ультразвуковым скальпелем произведена декортикация верхней и средней доли правого легкого – удалены фибринозно-гнойные наложения и плотные плевральные наслоения. Далее выделена и мобилизована бронхиальная культя, наложены провизорные краевые швы. В клетчатке переднего средостения визуализируется большое количество воздуха, с целью декомпрессии произведена продольная медиастинотомия. Плевральная полость тщательно санирована антисептиками. Установлена два дренажа
(в седьмом и четвертом межреберьях справа), один подведен к дефекту. Дренажи подключены к активной аспирации. Послеоперационно продолжена интенсивная терапия, включая дыхательную поддержку, нутритивную поддержку, коррекцию анемии.
В течение 10 сут после торакоскопической операции состояние стабилизировалось. Суточное количество отделяемого по дренажам снизилось до 50–100 мл, сброс воздуха по дренажам и подкожная эмфизема уменьшились. На 15-е сутки после торакоскопии у пациента отметилась отрицательная динамика: на фоне продолжающейся антибиотикотерапии гнойное воспаление в плевральной полости не ликвидировалось, усилилась одышка, температура повышалась до субфебрильных значений.
После консультации с федеральным центром было принято решение о наложении торакостомы справа (операция по типу окна по Eloesser), что позволило добиться адекватного постоянного оттока гноя и санации плевральной полости. В послеоперационном периоде проводились ежедневные санации и перевязки. Продолжена целенаправленная антибактериальная терапия (левофлоксацин, ко-тримоксазол); повторные посевы отделяемого из плевральной полости на этом фоне роста E. anophelis не выявили. Постепенно состояние больного улучшилось: синдром интоксикации регрессировал, острая дыхательная недостаточность купирована, плевральная полость санирована, отмечалось формирование грануляций. Через 3 нед после торакостомии пациент был переведен на этап долечивания в торакальное отделение по месту жительства с дальнейшим этапным хирургическим лечением в плановом порядке после очищения плевральной полости (пластика культи нижнедолевого бронха правого легкого, закрытие торакостомы).
Обсуждение
Представленный клинический случай демонстрирует крайне редкую этиологию послеоперационной плевральной эмпиемы. E. anophelis ранее не регистрировалась как возбудитель эмпиемы плевры в нашем регионе и крайне редко встречается в клинической практике.
В близком по сложности клиническом примере возбудитель инфекции также изначально был ошибочно идентифицирован с помощью автоматического анализатора как E. meningoseptica, и лишь метод MALDI-ToF уточнил видовую принадлежность (E. anophelis) [8]. Данный факт подчеркивает необходимость использования современных высокоточных методов (масc-спектрометрия, секвенирование 16S-рРНК) при атипичных патогенах [2, 9].
E. anophelis обладает уникальным профилем устойчивости к антибиотикам. В нашем случае выделенный штамм оказался резистентным практически ко всем тестированным препаратам, включая антибиотики резерва (например, комбинация имипенема с релебактамом, цефидерокол). Тем не менее фторхинолоны сохраняют активность против большинства изолятов Elizabethkingia [2]. В ряде публикаций отмечена эффективность левофлоксацина при тяжелых инфекциях, вызванных E. anophelis [2, 8]. Наш опыт согласуется с этими данными: несмотря на лабораторно подтвержденную устойчивость штамма к ципрофлоксацину, применение левофлоксацина в высокой дозе (в комбинации с адекватным дренированием) способствовало клиническому улучшению. Возможно, это связано с фармакокинетическими особенностями левофлоксацина и достижением высоких концентраций препарата в ткани легких и плевральной жидкости [8].
Даже самые современные антибиотики были бы недостаточно эффективны против E. anophelis при наличии персистирующего бронхоплеврального свища и обширной полости эмпиемы. Ликвидация источника инфекции потребовала агрессивной хирургической тактики: эндобронхиальная окклюзия свища дала лишь временный эффект, и потребовалось поэтапное выполнение декортикации легкого с дренированием плевральной полости, а затем открытой торакостомии. Известно, что открытая торакостомия (операция по типу окна по Eloesser) – радикальный, но подчас единственный способ контроля запущенной эмпиемы легкого с активной инфекцией [2]. В нашем случае торакостомия позволила успешно санировать плевральную полость; ее последующее закрытие планируется после полного очищения от инфекции. Отдельно следует отметить, что прямые бронхопластические вмешательства (например, повторное ушивание бронхиальной культи или пластика ее мышечным лоскутом) в условиях массивной инфекции сопровождались бы высоким риском несостоятельности швов, поэтому подобные реконструктивные этапы были отложены. Стратегически верным решением стало этапное ведение пациента с приоритетом контроля инфекции, а не немедленного восстановления целостности бронха.
Заключение
Данный клинический случай подчеркивает важность настороженности в отношении редких возбудителей при тяжелых гнойно-септических осложнениях. Междисциплинарный подход, современные диагностические технологии и решительные меры (как хирургические, так и рационально подобранные антибактериальные) являются залогом успешного исхода даже в ситуациях, не описанных в стандартных клинических рекомендациях.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Conflict of interest. The authors declare no conflicts of interest.
Финансирование. Выполнение работы не поддерживалось внешними источниками финансирования.
Funding. This work was not supported by external funding sources.
Список литературы доступен на сайте журнала https://klin-razbor.ru/
The list of references is available on the journal‘s website https://klin-razbor.ru/
Информация об авторах
Information about the authors
Столбова Марина Владимировна – канд. мед. наук, доц., зав. каф. фармакологии ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный медицинский университет». E-mail: stolbovam@yandex.ru; ORCID: 0000-0002-7536-0209
Marina V. Stolbova – Cand. Sci. (Med.), Аssoc. Prof., Orenburg State Medical University.
E-mail: stolbovam@yandex.ru; ORCID: 0000-0002-7536-0209
Федоров Михаил Евгеньевич – торакальный хирург торакального отд-ния ГАУЗ «Оренбургский областной клинический центр хирургии и травматологии». E-mail: fedorov.brown@yandex.ru; ORCID: 0009-0001-8464-7885
Mikhail E. Fedorov – thoracic surgeon, Orenburg Regional Clinical Center for Surgery and Traumatology. E-mail: fedorov.brown@yandex.ru; ORCID: 0009-0001-8464-7885
Панин Александр Сергеевич – торакальный хирург торакального отд-ния ГАУЗ «Оренбургский областной клинический центр хирургии и травматологии». E-mail: docent0556@mail.ru;
ORCID: 0009-0006-7798-3019
Aleksandr S. Panin – thoracic surgeon, Orenburg Regional Clinical Center for Surgery and Traumatology. E-mail: docent0556@mail.ru; ORCID: 0009-0006-7798-3019
Алданьязов Аманжан Саматович – студент ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный медицинский университет». E-mail: amanzhanaldanyazov@yandex.ru; ORCID: 0009-0003-5363-5747
Amanzhan S. Aldaniazov – Student, Orenburg State Medical University.
E-mail: amanzhanaldanyazov@yandex.ru; ORCID: 0009-0003-5363-5747
Макенова Алина Куандыковна – студентка ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный медицинский университет». E-mail: makenovaaa854@gmail.com; ORCID 0009-0007-4868-0905
Alina K. Makenova – Student, Orenburg State Medical University.
E-mail: makenovaaa854@gmail.com; ORCID 0009-0007-4868-0905
Никифоров Илья Николаевич – студент ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный медицинский университет». E-mail: iliya255555@gmail.com; ORCID: 0009-0000-5083-0895
Ilya N. Nikiforov – Student, Orenburg State Medical University. E-mail: iliya255555@gmail.com; ORCID: 0009-0000-5083-0895
Столбов Николай Александрович – студент ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный медицинский университет». E-mail: nikolaistol666@gmail.com; ORCID: 0009-0000-8742-1146
Nikolay A. Stolbov – Student, Orenburg State Medical University.
E-mail: nikolaistol666@gmail.com; ORCID: 0009-0000-8742-1146
Казакова Маргарита Андреевна – студентка ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный медицинский университет». E-mail: kazakova_m.a@mail.ru; ORCID: 0009-0008-5956-4886
Margarita A. Kazakova – Student, Orenburg State Medical University.
E-mail: kazakova_m.a@mail.ru; ORCID: 0009-0008-5956-4886
Поступила в редакцию: 20.03.2026
Поступила после рецензирования: 27.03.2026
Принята к публикации: 02.04.2026
Received: 20.03.2026
Revised: 27.03.2026
Accepted: 02.04.2026
Клинический разбор в общей медицине №07 2026
Клинический случай острой гнойной эмпиемы, вызванной Elizabethkingia anophelis
Номера страниц в выпуске:77-80
Аннотация
Острая гнойная эмпиема плевры – тяжелое осложнение после легочной резекции, обычно обусловленное типичной микрофлорой. Однако редкие оппортунистические патогены, такие как Elizabethkingia anophelis, способны вызывать тяжелые инфекции, трудно поддающиеся терапии из-за широкой лекарственной устойчивости. Проведен анализ клинических данных 69-летнего пациента с эмпиемой плевры, развившейся после пульмонэктомии. Выполнялись этапные хирургические вмешательства (эндобронхиальная окклюзия, торакоскопическая санация, декортикация легкого, медиастинотомия, редренирование плевральной полости, открытая торакостомия) и расширенные микробиологические исследования (идентификация возбудителя методом MALDI-ToF MS, тестирование чувствительности по критериям EUCAST). Стандартная эмпирическая антибиотикотерапия (меропенем, метронидазол) оказалась неэффективной.
В плевральном экссудате выделена E. anophelis, резистентная к большинству антибиотиков. Ранняя точная идентификация редкого возбудителя E. anophelis и мультимодальное лечение (адекватное дренирование плевральной полости, комбинированная антибактериальная терапия) обеспечили успешный исход, что подчеркивает важность своевременной диагностики и междисциплинарного подхода.
Ключевые слова: эмпиема плевры, Elizabethkingia anophelis, резистентность к антибиотикам, торакальная хирургия, оппортунистическая инфекция.
Для цитирования: Столбова М.В., Федоров М.Е., Панин А.С., Алданьязов А.С., Макенова А.К., Никифоров И.Н., Столбов Н.А., Казакова М.А. Клинический случай острой гнойной эмпиемы, вызванной Elizabethkingia anophelis. Клинический разбор в общей медицине. 2026; 7 (7): 77–80. DOI: 10.47407/kr2026.7.7.00889
Острая гнойная эмпиема плевры – тяжелое осложнение после легочной резекции, обычно обусловленное типичной микрофлорой. Однако редкие оппортунистические патогены, такие как Elizabethkingia anophelis, способны вызывать тяжелые инфекции, трудно поддающиеся терапии из-за широкой лекарственной устойчивости. Проведен анализ клинических данных 69-летнего пациента с эмпиемой плевры, развившейся после пульмонэктомии. Выполнялись этапные хирургические вмешательства (эндобронхиальная окклюзия, торакоскопическая санация, декортикация легкого, медиастинотомия, редренирование плевральной полости, открытая торакостомия) и расширенные микробиологические исследования (идентификация возбудителя методом MALDI-ToF MS, тестирование чувствительности по критериям EUCAST). Стандартная эмпирическая антибиотикотерапия (меропенем, метронидазол) оказалась неэффективной.
В плевральном экссудате выделена E. anophelis, резистентная к большинству антибиотиков. Ранняя точная идентификация редкого возбудителя E. anophelis и мультимодальное лечение (адекватное дренирование плевральной полости, комбинированная антибактериальная терапия) обеспечили успешный исход, что подчеркивает важность своевременной диагностики и междисциплинарного подхода.
Ключевые слова: эмпиема плевры, Elizabethkingia anophelis, резистентность к антибиотикам, торакальная хирургия, оппортунистическая инфекция.
Для цитирования: Столбова М.В., Федоров М.Е., Панин А.С., Алданьязов А.С., Макенова А.К., Никифоров И.Н., Столбов Н.А., Казакова М.А. Клинический случай острой гнойной эмпиемы, вызванной Elizabethkingia anophelis. Клинический разбор в общей медицине. 2026; 7 (7): 77–80. DOI: 10.47407/kr2026.7.7.00889
Clinical case of acute purulent empyema caused by Elizabethkingia anopheles
Marina V. Stolbova1, Mikhail E. Fedorov2, Aleksandr S. Panin2, Amanzhan S. Aldaniazov1,
Alina K. Makenova1, Ilya N. Nikiforov1, Nikolay A. Stolbov1, Margarita A. Kazakova1
1 Orenburg State Medical University, Orenburg, Russia;
2 Orenburg Regional Clinical Center for Surgery and Traumatology, Orenburg, Russia
amanzhanaldanyazov@yandex.ru
Abstract
Acute purulent pleural empyema is a severe post-surgical complication, typically caused by common pathogens. However, rare opportunistic bacteria such as Elizabethkingia anophelis can lead to severe infections that are difficult to treat due to broad antibiotic resistance. We analyzed clinical data of a 69-year-old male patient with pleural empyema following lung lobectomy. Staged interventions were performed (endobronchial valve occlusion, thoracoscopic pleural sanitation, open thoracostomy) alongside advanced microbiological examinations (pathogen identification by MALDI-ToF MS and susceptibility testing according to EUCAST criteria). Standard empirical antimicrobial therapy (meropenem, metronidazole) was ineffective. E. anophelis, resistant to most antibiotics, was isolated from the pleural exudate. Early accurate identification of the rare pathogen E. anophelis and a multimodal treatment strategy (adequate pleural drainage with combined antibiotic therapy) led to a successful outcome, highlighting the importance of timely diagnosis and a multidisciplinary approach.
Keywords: pleural empyema, Elizabethkingia anopheles, antibiotic resistance, thoracic surgery, opportunistic infection.
For citation: Stolbova M.V., Fedorov M.E., Panin A.S., Aldaniazov A.S., Makenova A.K., Nikiforov I.N., Stolbov N.A., Kazakova M.A. Clinical case of acute purulent empyema caused by Elizabethkingia anopheles. Clinical review for general practice. 2026; 7 (7): 77–80 (In Russ.).
DOI: 10.47407/kr2026.7.7.00889
Oстрая гнойная эмпиема плевры – тяжелое инфекционно-хирургическое осложнение, особенно в случаях несостоятельности бронхиальной культи после резекции легкого. Успешное лечение требует адекватной эвакуации гноя, устранения сообщения бронха с плеврой и правильного подбора антибиотикотерапии. Стандартная эмпирическая терапия эмпием нацелена на распространенных возбудителей (стафилококки, стрептококки, анаэробы и пр.). Однако в отдельных ситуациях причиной эмпиемы могут выступать редкие условно-патогенные микроорганизмы, часто устойчивые к большинству антибиотиков, что существенно затрудняет лечение [1, 2]. Одним из таких нетипичных возбудителей является Elizabethkingia anophelis – грамотрицательная неферментирующая палочка из семейства Flavobacteriaceae. Эта бактерия считается оппортунистическим патогеном, вызывающим тяжелые инфекции у новорожденных и ослабленных взрослых пациентов [2–4]. В последние годы отмечается рост числа сообщений об инфекциях, вызываемых E. anophelis, представляющих угрозу жизни пациентов [5]. Зарегистрированы вспышки госпитальных инфекций, вызванных E. anophelis, в разных странах [6, 7].
Особую проблему представляет множественная лекарственная устойчивость E. anophelis. Для данного возбудителя характерна врожденная резистентность к большинству β-лактамных антибиотиков (включая цефалоспорины и карбапенемы), к аминогликозидам и другим распространенным препаратам [1, 8]. Стандартные автоматизированные идентификационные системы могут ошибочно определять E. anophelis как близкородственный вид E. meningoseptica, затрудняя выбор адекватной терапии [2, 8]. В то же время E. anophelis нередко сохраняет чувствительность к фторхинолонам, тетрациклинам, рифампицинам и сульфаниламидам. Поэтому ранняя точная идентификация патогена и тестирование его чувствительности имеют решающее значение для снижения летальности [2]. По данным разных исследований, летальность при инфекциях, вызванных E. anophelis, достигает 24–57% вследствие задержки назначения эффективных антибиотиков [2, 6].
Исходя из вышесказанного, представлялся актуальным анализ редкого случая послеоперационной эмпиемы плевры, вызванной E. anophelis.
Клинический случай
Пациент Х., 69 лет, поступил в пульмонологический центр в мае 2025 г. с диагнозом «периферический рак нижней доли правого легкого T1bN0M0». Пациенту проведена расширенная нижняя лобэктомия справа с системной лимфаденэктомией. По результатам гистологического исследования выявлена аденокарцинома. В раннем послеоперационном периоде состояние осложнилось несостоятельностью культи правого нижнедолевого бронха, что привело к развитию правостороннего пневмоторакса, пневмомедиастинума, обширной подкожной эмфиземы и дальнейшему развитию острой гнойной эмпиемы плевры справа. По поводу сформировавшейся эмпиемы плевры на 26-е сутки после расширенной нижней лобэктомии пациент переведен в областной центр торакальной хирургии.

При поступлении в хирургическое торакальное отделение: состояние тяжелое, одышка, обширная подкожная эмфизема распространяется на лицо, шею, грудную клетку, верхние отделы живота и конечностей. В правой плевральной полости дренаж по Бюлау, по дренажу активный сброс воздуха и эвакуация гнойного экссудата. Дренаж подключен к аппарату активной плевроаспирации. Температура тела 37,0°С, частота сердечных сокращений – 97 уд/мин, артериальное давление – 130/80 мм рт. ст., частота дыхательных движений (ЧДД) – 24 в минуту, сатурация – 95–96% на увлажненном кислороде потоком 7 л/мин. Послеоперационные раны на грудной клетке зажиты первично, без признаков воспаления и нагноения. Предварительный диагноз: «Острая гнойная эмпиемы плевры справа с бронхоплевральным свищом. Состояние после расширенной нижней лобэктомии справа. Несостоятельность культи нижнедолевого бронха правого легкого. Пневмомедиастинум. Обширная подкожная эмфизема. Острая дыхательная недостаточность». Начата эмпирическая антибактериальная терапия: меропенем 1 г 3 раза в сутки внутривенно, метронидазол 500 мг 3 раза в сутки внутривенно капельно. Проводились ежедневные санации плевральной полости антисептиками с активной аспирацией содержимого. Ввиду продолжающегося активного сброса воздуха по дренажу консилиум торакальных хирургов принял решение об эндоскопической клапанной бронхоблокации с целью купирования бронхоплеврального свища. Под местной анестезией выполнена лечебно-диагностическая фибробронхоскопия: визуализирован дефект культи правого нижнедолевого бронха диаметром около 10 мм, покрытый фибринозным налетом. В просвет культи установлен односторонний клапанный эндобронхиальный блокатор №12. После установки клапана поступление воздуха в плевральную полость прекратилось; плевральный экссудат эвакуирован до формирования отрицательного давления. Продолжены антибактериальная терапия, санации плевральной полости. На фоне проводимого лечения отмечалась положительная динамика: сброса воздуха не наблюдалось, отделяемое стало светлее, подкожная эмфизема значительно уменьшилась. Однако на 6-е сутки вновь появился сброс воздуха по дренажу, наросла подкожная эмфизема. Выполнена контрольная фибробронхоскопия, при которой обнаружена дислокация эндобронхиального клапана в плевральную полость: свищевой дефект вновь открыт, диаметр до 20 мм, клапан сместился в плевральную полость, удален эндоскопически. Таким образом, малоинвазивная попытка устранения бронхоплеврального свища оказалась неэффективной. Состояние прогрессивно ухудшалось: наросла дыхательная недостаточность (ЧДД – 25–30 в минуту, требовалась кислородная поддержка), сохранялся обильный дренаж гнойного отделяемого (200–300 мл/сут) с активным сбросом воздуха.
Лабораторные и инструментальные методы обследования. Компьютерная томография органов грудной клетки (при поступлении) подтвердила наличие обширного правостороннего пневмогидроторакса на фоне послеоперационного дефекта бронха. Правое легкое частично ателектазировано и сдавлено; висцеральная плевра утолщена местами до 5–7 мм. В просвете плевральной полости определяются уровень жидкости (~25 мм) и свободный газ. Выражены признаки медиастинальной и подкожной эмфиземы. Контрольная обзорная рентгенография после повторного оперативного вмешательства (от 28.06.2025) показала частичный ателектаз правого легкого, умеренное количество воздуха и жидкости в правой плевральной полости; дренажи установлены корректно. Сохранялись признаки пневмосклероза и подкожной эмфиземы.
При поступлении был взят посев плеврального отделяемого, однако первоначально роста патогенной флоры не получено (результат интерпретирован как смешанная госпитальная микрофлора). С учетом неблагоприятной динамики инфекционного процесса консилиумом принято решение о расширенном микробиологическом анализе. Повторный забор гнойного содержимого из плевральной полости произведен на 14-е сутки после поступления, материал направлен в референс-лабораторию для углубленного исследования. Посев на аэробные/анаэробные бактерии и грибы выполнен с применением автоматизированных анализаторов; идентификация возбудителя – методом MALDI-ToF масс-спектрометрии. По результатам культурального исследования (протокол №1626 от 26.06.2025) выросла чистая культура, идентифицированная как E. anophelis (концентрация ~106 КОЕ/мл). Чувствительность выделенного штамма к антибиотикам, согласно критериям EUCAST, оказалась резко ограниченной (см. таблицу). Таким образом, стандартная комбинированная терапия меропенемом и метронидазолом не могла эрадицировать данный возбудитель. По согласованию с клиническим фармакологом антибиотикотерапию продолжили препаратами резерва, потенциально активными против Elizabethkingia: с 24.06.2025 эмпирически начато применение левофлоксацина (высокодозно) и ко-тримоксазола.
Выполнена видеоторакоскопия (25.06.2025) с ревизией правой плевральной полости. Обнаружено коллабированное легкое легкое; париетальная и висцеральная плевра гиперемирована, покрыта толстым слоем фибринозно-гнойных наложений, оболочки уплотнены местами до 3–5 мм. В проекции корня правого легкого визуализирована культя нижнедолевого бронха с зияющим дефектом 15–20 мм. Ультразвуковым скальпелем произведена декортикация верхней и средней доли правого легкого – удалены фибринозно-гнойные наложения и плотные плевральные наслоения. Далее выделена и мобилизована бронхиальная культя, наложены провизорные краевые швы. В клетчатке переднего средостения визуализируется большое количество воздуха, с целью декомпрессии произведена продольная медиастинотомия. Плевральная полость тщательно санирована антисептиками. Установлена два дренажа
(в седьмом и четвертом межреберьях справа), один подведен к дефекту. Дренажи подключены к активной аспирации. Послеоперационно продолжена интенсивная терапия, включая дыхательную поддержку, нутритивную поддержку, коррекцию анемии.
В течение 10 сут после торакоскопической операции состояние стабилизировалось. Суточное количество отделяемого по дренажам снизилось до 50–100 мл, сброс воздуха по дренажам и подкожная эмфизема уменьшились. На 15-е сутки после торакоскопии у пациента отметилась отрицательная динамика: на фоне продолжающейся антибиотикотерапии гнойное воспаление в плевральной полости не ликвидировалось, усилилась одышка, температура повышалась до субфебрильных значений.
После консультации с федеральным центром было принято решение о наложении торакостомы справа (операция по типу окна по Eloesser), что позволило добиться адекватного постоянного оттока гноя и санации плевральной полости. В послеоперационном периоде проводились ежедневные санации и перевязки. Продолжена целенаправленная антибактериальная терапия (левофлоксацин, ко-тримоксазол); повторные посевы отделяемого из плевральной полости на этом фоне роста E. anophelis не выявили. Постепенно состояние больного улучшилось: синдром интоксикации регрессировал, острая дыхательная недостаточность купирована, плевральная полость санирована, отмечалось формирование грануляций. Через 3 нед после торакостомии пациент был переведен на этап долечивания в торакальное отделение по месту жительства с дальнейшим этапным хирургическим лечением в плановом порядке после очищения плевральной полости (пластика культи нижнедолевого бронха правого легкого, закрытие торакостомы).
Обсуждение
Представленный клинический случай демонстрирует крайне редкую этиологию послеоперационной плевральной эмпиемы. E. anophelis ранее не регистрировалась как возбудитель эмпиемы плевры в нашем регионе и крайне редко встречается в клинической практике.
В близком по сложности клиническом примере возбудитель инфекции также изначально был ошибочно идентифицирован с помощью автоматического анализатора как E. meningoseptica, и лишь метод MALDI-ToF уточнил видовую принадлежность (E. anophelis) [8]. Данный факт подчеркивает необходимость использования современных высокоточных методов (масc-спектрометрия, секвенирование 16S-рРНК) при атипичных патогенах [2, 9].
E. anophelis обладает уникальным профилем устойчивости к антибиотикам. В нашем случае выделенный штамм оказался резистентным практически ко всем тестированным препаратам, включая антибиотики резерва (например, комбинация имипенема с релебактамом, цефидерокол). Тем не менее фторхинолоны сохраняют активность против большинства изолятов Elizabethkingia [2]. В ряде публикаций отмечена эффективность левофлоксацина при тяжелых инфекциях, вызванных E. anophelis [2, 8]. Наш опыт согласуется с этими данными: несмотря на лабораторно подтвержденную устойчивость штамма к ципрофлоксацину, применение левофлоксацина в высокой дозе (в комбинации с адекватным дренированием) способствовало клиническому улучшению. Возможно, это связано с фармакокинетическими особенностями левофлоксацина и достижением высоких концентраций препарата в ткани легких и плевральной жидкости [8].
Даже самые современные антибиотики были бы недостаточно эффективны против E. anophelis при наличии персистирующего бронхоплеврального свища и обширной полости эмпиемы. Ликвидация источника инфекции потребовала агрессивной хирургической тактики: эндобронхиальная окклюзия свища дала лишь временный эффект, и потребовалось поэтапное выполнение декортикации легкого с дренированием плевральной полости, а затем открытой торакостомии. Известно, что открытая торакостомия (операция по типу окна по Eloesser) – радикальный, но подчас единственный способ контроля запущенной эмпиемы легкого с активной инфекцией [2]. В нашем случае торакостомия позволила успешно санировать плевральную полость; ее последующее закрытие планируется после полного очищения от инфекции. Отдельно следует отметить, что прямые бронхопластические вмешательства (например, повторное ушивание бронхиальной культи или пластика ее мышечным лоскутом) в условиях массивной инфекции сопровождались бы высоким риском несостоятельности швов, поэтому подобные реконструктивные этапы были отложены. Стратегически верным решением стало этапное ведение пациента с приоритетом контроля инфекции, а не немедленного восстановления целостности бронха.
Заключение
Данный клинический случай подчеркивает важность настороженности в отношении редких возбудителей при тяжелых гнойно-септических осложнениях. Междисциплинарный подход, современные диагностические технологии и решительные меры (как хирургические, так и рационально подобранные антибактериальные) являются залогом успешного исхода даже в ситуациях, не описанных в стандартных клинических рекомендациях.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Conflict of interest. The authors declare no conflicts of interest.
Финансирование. Выполнение работы не поддерживалось внешними источниками финансирования.
Funding. This work was not supported by external funding sources.
Список литературы доступен на сайте журнала https://klin-razbor.ru/
The list of references is available on the journal‘s website https://klin-razbor.ru/
Информация об авторах
Information about the authors
Столбова Марина Владимировна – канд. мед. наук, доц., зав. каф. фармакологии ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный медицинский университет». E-mail: stolbovam@yandex.ru; ORCID: 0000-0002-7536-0209
Marina V. Stolbova – Cand. Sci. (Med.), Аssoc. Prof., Orenburg State Medical University.
E-mail: stolbovam@yandex.ru; ORCID: 0000-0002-7536-0209
Федоров Михаил Евгеньевич – торакальный хирург торакального отд-ния ГАУЗ «Оренбургский областной клинический центр хирургии и травматологии». E-mail: fedorov.brown@yandex.ru; ORCID: 0009-0001-8464-7885
Mikhail E. Fedorov – thoracic surgeon, Orenburg Regional Clinical Center for Surgery and Traumatology. E-mail: fedorov.brown@yandex.ru; ORCID: 0009-0001-8464-7885
Панин Александр Сергеевич – торакальный хирург торакального отд-ния ГАУЗ «Оренбургский областной клинический центр хирургии и травматологии». E-mail: docent0556@mail.ru;
ORCID: 0009-0006-7798-3019
Aleksandr S. Panin – thoracic surgeon, Orenburg Regional Clinical Center for Surgery and Traumatology. E-mail: docent0556@mail.ru; ORCID: 0009-0006-7798-3019
Алданьязов Аманжан Саматович – студент ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный медицинский университет». E-mail: amanzhanaldanyazov@yandex.ru; ORCID: 0009-0003-5363-5747
Amanzhan S. Aldaniazov – Student, Orenburg State Medical University.
E-mail: amanzhanaldanyazov@yandex.ru; ORCID: 0009-0003-5363-5747
Макенова Алина Куандыковна – студентка ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный медицинский университет». E-mail: makenovaaa854@gmail.com; ORCID 0009-0007-4868-0905
Alina K. Makenova – Student, Orenburg State Medical University.
E-mail: makenovaaa854@gmail.com; ORCID 0009-0007-4868-0905
Никифоров Илья Николаевич – студент ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный медицинский университет». E-mail: iliya255555@gmail.com; ORCID: 0009-0000-5083-0895
Ilya N. Nikiforov – Student, Orenburg State Medical University. E-mail: iliya255555@gmail.com; ORCID: 0009-0000-5083-0895
Столбов Николай Александрович – студент ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный медицинский университет». E-mail: nikolaistol666@gmail.com; ORCID: 0009-0000-8742-1146
Nikolay A. Stolbov – Student, Orenburg State Medical University.
E-mail: nikolaistol666@gmail.com; ORCID: 0009-0000-8742-1146
Казакова Маргарита Андреевна – студентка ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный медицинский университет». E-mail: kazakova_m.a@mail.ru; ORCID: 0009-0008-5956-4886
Margarita A. Kazakova – Student, Orenburg State Medical University.
E-mail: kazakova_m.a@mail.ru; ORCID: 0009-0008-5956-4886
Поступила в редакцию: 20.03.2026
Поступила после рецензирования: 27.03.2026
Принята к публикации: 02.04.2026
Received: 20.03.2026
Revised: 27.03.2026
Accepted: 02.04.2026
Список исп. литературыСкрыть список1. Канашенко М.Е., Карцев Н.Н., Мицевич И.П. и др. Elizabethkingia meningoseptica как значимый клинический патоген. Бактериология. 2019;4(1):58-63. DOI: 10.20953/2500-1027-2019-1-58-63
Kanashenko M.E., Kartsev N.N., Mitsevich I.P. et al. Elizabethkingia meningoseptica as a significant clinical pathogen. Bakteriologiya = Bacteriology. 2019;4(1):58-63. DOI: 10.20953/2500-1027-2019-1-58-63 (in Russian).
2. Güler E, Hürdoğanoglu U, Çakır N et al. Multidrug-resistant Elizabethkingia anophelis-induced bacteremia in a hemodialysis patient in the ICU: first case in North Cyprus. Cyprus J Med Sci 2023;8(3):237-40. DOI: 10.4274/cjms.2023.2022-63
3. Wang B, Cheng R, Feng Y et al. Elizabethkingia anophelis: an important emerging cause of neonatal sepsis and meningitis in China. Pediatr Infect Dis J 2022;41(5):e228-e232. DOI: 10.1097/INF.0000000000003481
4. Baruah FK, Borkakoty B, Ahmed A, Bora P. Neonatal meningitis and septicemia caused by multidrug-resistant Elizabethkingia anophelis identified by 16S rRNA: an emerging threat. J Glob Infect Dis 2020;12(4):225-7. DOI: 10.4103/jgid.jgid_91_20
5. Aydemir O, Sahin Özozen E, Elmas B, Caha V. A rare infectious agent: Elizabethkingia anophelis – second case reported from Turkey. Konuralp Med J 2022;14(1):168-71. DOI: 10.18521/ktd.976196
6. Lin JN, Lai CH, Yang CH, Huang YH. Elizabethkingia infections in humans: from genomics to clinics. Microorganisms 2019;7(9):295. DOI: 10.3390/microorganisms7090295
7. Nievas J, Ibanez ML, Allende L et al. Emergence of Elizabethkingia anophelis: first outbreak in a neonatal unit in Argentina. Clin Infect Pract 2022;13:100122. DOI: 10.1016/j.clinpr.2021.100122
8. Есауленко НБ, Ткаченко ОВ, Казаков СП и др. Микст-инфекция трахеобронхиального дерева, вызванная бактериями Elizabethkingia anophelis у пострадавшего с черепно-мозговым ранением: этиология, диагностика и антибактериальная терапия (клинический случай). Клиническая лабораторная диагностика. 2024;69(7):101-10. DOI: 10.17816/cld632353
Esaulenko N.B., Tkachenko O.V., Kazakov S.P. et al. Mixed infection of the tracheobronchial tree caused by Elizabethkingia anophelis in a traumatic brain injury patient: etiology, diagnostics and antibacterial therapy (clinical case). Klinicheskaya laboratornaya diagnostika = Russian Clinical Laboratory Diagnostics. 2024;69(7):101-10. DOI: 10.17816/cld632353 (in Russian).
9. Sahoo RK, Sahoo S, Das A et al. A phylogenetic study of Elizabethkingia anophelis bloodstream isolates from inpatients at a single medical center. Infect Control Hosp Epidemiol 2019;40(10):1202-4. DOI: 10.1017/ice.2019.219
11 августа 2026
Количество просмотров: 83
